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<BODY lang=EN-US style="tab-interval: .5in" vLink=blue link=blue bgColor=white>
<DIV><FONT face=Arial size=2>George Cole</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=Arial size=2>The slide was left out exposed to sunlight for a 
prolonged period, probably several weeks and yes all our slides are coverslipped 
using the same coverslipping tape.</FONT></DIV>
<DIV>.....................................................<BR>Peter 
Smale<BR>Anatomical Pathology<BR>National Health Laboratory Service<BR>Chris 
Hani Baragwanath Hospital<BR>Soweto, Johannesburg<BR>tel:&nbsp;&nbsp; +2711 
4898711<BR>fax:&nbsp; +2711 4898717 <BR>e-mail: <A 
href="mailto:peter.smale@nhls.ac.za">peter.smale@nhls.ac.za</A></DIV>
<DIV>&nbsp;</DIV>
<DIV>This message is for the designated recipient only and may contain 
priviliged,<BR>prorietary, or otherwise privare information. If you have 
received it in error,<BR>please notify the sender immediately and delete the 
original. <BR>Any other use of the email by you is 
prohibited.<BR>-----------------------------------------------------<BR></DIV>
<BLOCKQUOTE dir=ltr 
style="PADDING-RIGHT: 0px; PADDING-LEFT: 5px; MARGIN-LEFT: 5px; BORDER-LEFT: #000000 2px solid; MARGIN-RIGHT: 0px">
  <DIV style="FONT: 10pt arial">----- Original Message ----- </DIV>
  <DIV 
  style="BACKGROUND: #e4e4e4; FONT: 10pt arial; font-color: black"><B>From:</B> 
  <A title=georgecole@ev1.net href="mailto:georgecole@ev1.net">George Cole</A> 
  </DIV>
  <DIV style="FONT: 10pt arial"><B>To:</B> <A title=peter.smale@nhls.ac.za 
  href="mailto:peter.smale@nhls.ac.za">'Peter Smale'</A> </DIV>
  <DIV style="FONT: 10pt arial"><B>Sent:</B> Tuesday, November 25, 2003 10:43 
  AM</DIV>
  <DIV style="FONT: 10pt arial"><B>Subject:</B> RE: [Histonet] restaining of 
  hematoxylin and eosin tissue sections</DIV>
  <DIV><BR></DIV>
  <DIV class=Section1>
  <P class=MsoNormal><FONT face=Arial color=navy size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; COLOR: navy; FONT-FAMILY: Arial">Peter,<o:p></o:p></SPAN></FONT></P>
  <P class=MsoNormal><FONT face=Arial color=navy size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; COLOR: navy; FONT-FAMILY: Arial">No clear answers from 
  me, but one vague guess<SPAN class=GramE>----<SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>What</SPAN> caused the H &amp; E to 
  fade? H &amp; E’s seem to hold up pretty well. Did a lot of people look at the 
  slide for prolonged periods under bright light? If not<SPAN class=GramE>, 
  <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>I</SPAN> would consider the 
  covering method----that’s the only difference that I can see between that H 
  &amp; E and a million other <SPAN class=SpellE>unfaded</SPAN> H &amp; E’s. It 
  doesn’t seem likely that it involved the reagents you used to remove the cover 
  and the residual of the covering, because the fading had already taken place. 
  Do you have any other H &amp; E’s covered the same way?<SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>How are they? I hope you solve your 
  problem.<o:p></o:p></SPAN></FONT></P>
  <P class=MsoNormal><FONT face=Arial color=navy size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; COLOR: navy; FONT-FAMILY: Arial">georgecole@ev1.net 
  <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN><SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN><SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>.<SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp; 
  </SPAN><SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN><SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN><SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN><o:p></o:p></SPAN></FONT></P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN-LEFT: 0.5in"><FONT face=Tahoma size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Tahoma">-----Original 
  Message-----<BR><B><SPAN style="FONT-WEIGHT: bold">From:</SPAN></B> 
  histonet-admin@lists.utsouthwestern.edu 
  [mailto:histonet-admin@lists.utsouthwestern.edu] <B><SPAN 
  style="FONT-WEIGHT: bold">On Behalf Of </SPAN></B>Peter Smale<BR><B><SPAN 
  style="FONT-WEIGHT: bold">Sent:</SPAN></B> </SPAN></FONT><st1:date Year="2003" 
  Day="25" Month="11"><FONT face=Tahoma size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Tahoma">Tuesday, November 25, 
  2003</SPAN></FONT></st1:date><FONT face=Tahoma size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Tahoma"> </SPAN></FONT><st1:time 
  Minute="17" Hour="0"><FONT face=Tahoma size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Tahoma">12:17 
  AM</SPAN></FONT></st1:time><FONT face=Tahoma size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Tahoma"><BR><B><SPAN 
  style="FONT-WEIGHT: bold">To:</SPAN></B> 
  histonet@lists.utsouthwestern.edu<BR><B><SPAN 
  style="FONT-WEIGHT: bold">Subject:</SPAN></B> [Histonet] restaining of 
  hematoxylin and eosin tissue sections<BR><B><SPAN 
  style="FONT-WEIGHT: bold">Importance:</SPAN></B> High</SPAN></FONT></P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN-LEFT: 0.5in"><FONT face="Times New Roman" 
  size=3><SPAN style="FONT-SIZE: 12pt"><o:p>&nbsp;</o:p></SPAN></FONT></P>
  <DIV>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN-LEFT: 0.5in"><FONT face=Arial size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Arial">I wonder if someone can assist me 
  in solving this problem.I retrieved a hematoxylin and eosin/phloxine stained 
  slide from 1998 and discovered it was faded.The tissue section was mounted in 
  a coverslipping machine that uses coverslipping tape composed of cellulose 
  triacetate and is coated on one side with resinous mountant.This is the 
  procedure I followed to decoverslip,decolorise and restain: I placed the slide 
  in acetone for 7 minutes&nbsp;to remove the coverslip and then put the slide 
  in xylene for 6 hours&nbsp;to remove any residual resinous mountant.I took the 
  slide through graded ethanols to water after which I decolorised with 
  acid/alcohol for one minute, took the slide back to water and restained the 
  nuclei&nbsp;with Gill's Hematoxylin&nbsp;( for 5 min. )&nbsp;and 
  counterstained with a mixture of 2% eosin y and 1% phloxine B&nbsp;with 4 
  drops of conc. glacial acetic acid added ( for 3 min. ).The nuclear staining 
  turned out pale and the counter stain was patchy almost as if something was 
  blocking the tissue's ability to retain the dyes I cannot figure out why the 
  tissue is not staining with the same intensity as it did in 1998.Please keep 
  in mind the slide was left out in natural light for a while which resulted in 
  it becoming faded.</SPAN></FONT><o:p></o:p></P></DIV>
  <DIV>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN-LEFT: 0.5in"><FONT face=Arial size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Arial">.....................................................<BR>Peter 
  Smale<BR>Anatomical Pathology<BR>National Health Laboratory Service<BR>Chris 
  Hani Baragwanath Hospital<BR>Soweto, Johannesburg, South 
  Africa<BR>tel:&nbsp;&nbsp; +2711 4898711<BR>fax:&nbsp; +2711 4898717 
  <BR>e-mail: <A 
  href="mailto:peter.smale@nhls.ac.za">peter.smale@nhls.ac.za</A></SPAN></FONT><o:p></o:p></P></DIV>
  <DIV>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN-LEFT: 0.5in"><FONT face="Times New Roman" 
  size=3><SPAN style="FONT-SIZE: 12pt">&nbsp;<o:p></o:p></SPAN></FONT></P></DIV>
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  <P class=MsoNormal style="MARGIN-LEFT: 0.5in"><FONT face=Arial size=2><SPAN 
  style="FONT-SIZE: 10pt; FONT-FAMILY: Arial">This message is for the designated 
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