<META HTTP-EQUIV="Content-Type" CONTENT="text/html; charset=utf-8">
<!DOCTYPE HTML PUBLIC "-//W3C//DTD HTML 3.2//EN">
<HTML>
<HEAD>

<META NAME="Generator" CONTENT="MS Exchange Server version 6.0.6249.1">
<TITLE>[Histonet] Cell Culture Staining</TITLE>
</HEAD>
<BODY dir=ltr>
<DIV>When I H&amp;E my frozen sections I don't use Xylene.&nbsp; I merely skip 
the Xylene and alcohol steps, go straight to dH2O and stain.&nbsp; When I get to 
Eosin, I just rinse with&nbsp;dH2O and mount coverslips on (if possible) with 
ageous mounting media.&nbsp; This is probably no help if you have no way to 
coverslip them.&nbsp; But, this is my suggestion.</DIV>
<DIV>Gareth</DIV>
<DIV>&nbsp;</DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Ms. Gareth B. Davis</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2><STRONG>Research Assistant 
II</STRONG></FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Neuro-magnetics Division of 
</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>the Department of 
Neurology</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Vanderbilt University Medical 
Center</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>615-936-3318</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2></FONT>&nbsp;</DIV>
<DIV>&nbsp;</DIV>
<BLOCKQUOTE dir=ltr style="MARGIN-RIGHT: 0px">
  <DIV><FONT size=2>-----Original Message----- <BR><B>From:</B> Johnson, Kevin 
  [mailto:KJohnson@med.miami.edu] <BR><B>Sent:</B> Fri 10/3/2003 4:29 PM 
  <BR><B>To:</B> 'histonet@lists.utsouthwestern.edu' <BR><B>Cc:</B> 
  <BR><B>Subject:</B> [Histonet] Cell Culture Staining<BR><BR></FONT></DIV>
  <P><FONT size=2>Greetings, all.<BR><BR>A researcher just brought me (at Miller 
  Time on a Friday!) two culture<BR>flasks of terminally differentiated Sertoli 
  cells and requested H&amp;E<BR>staining.&nbsp; Well.&nbsp;<BR><BR>Conventional 
  H&amp;E obviously is out, since polystyrene is not compatible 
  with<BR>xylene.&nbsp; Further restrictions: the cells cannot be scraped off, 
  they cannot<BR>be replated on glass coverslips, and for reasons of her own, 
  they cannot go<BR>back into the incubator pending an answer.&nbsp; They now 
  have been fixed in situ<BR>with 10% neutral buffered formalin.<BR><BR>Does 
  anyone have a protocol for staining these puppies?&nbsp; If not H&amp;E per 
  se,<BR>then is there another staining method that might satisfy 
  her?<BR><BR>Thanks in advance,<BR><BR>Kevin Johnson<BR>University of 
  Miami<BR>Diabetes Research 
  Institute<BR><BR><BR>_______________________________________________<BR>Histonet 
  mailing list<BR>Histonet@lists.utsouthwestern.edu<BR><A 
  href="http://lists.utsouthwestern.edu/mailman/listinfo/histonet">http://lists.utsouthwestern.edu/mailman/listinfo/histonet</A><BR></FONT></P></BLOCKQUOTE>

</BODY>
</HTML>