<!DOCTYPE HTML PUBLIC "-//W3C//DTD HTML 4.0 Transitional//EN">
<HTML><HEAD>
<META http-equiv=Content-Type content="text/html; charset=iso-8859-1">
<META content="MSHTML 5.50.4807.2300" name=GENERATOR></HEAD>
<BODY style="MARGIN: 4px 4px 1px; FONT: 10pt MS Sans Serif">
<DIV>Hi, membrane slides are like plastic wrap over a glass slide, hand glued or 
you can buy them in a hard plastic cut-out slide with the plastic membrane 
sealed into it. I'm not sure you can charge the membrane but I don't lay it on 
the water bath. It seems that the 12 microns that the researcher wanted it cut 
at was too thick.&nbsp; I have since found out it should be cut at 6 microns for 
laser cutting and DNA studies. But I will keep your info in mind when I cut with 
charged slides. Thanks for the tip.</DIV>
<DIV>Lil Muolo</DIV>
<DIV>Immuno. Lab</DIV>
<DIV>Cancer Institute of New Jersey<BR><BR>&gt;&gt;&gt; Margaret Horne 
&lt;mhorne@upei.ca&gt; 10/1/03 10:45:20 AM &gt;&gt;&gt;<BR></DIV>
<DIV>I don't know about membrane slides , but I had a lot of problems <BR>with 
tissue floating off during IHC. Then someone pointed out that I <BR>was using 
charged slides but laying them out on the side of the <BR>water bath. The water 
bath is grounded and therefore I may have <BR>been losing the charge on the 
slide and it's the charge that keeps <BR>ithe tissue on. Stopped touching the 
slides to the water bath and <BR>stopped losing tissue.What can I say... it 
worked for me. <BR>Membrane slides may be very different. I don't know. 
<BR><BR>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; Good 
luck,<BR><BR>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; 
Margaret<BR>Margaret Horne ,<BR>Histology Teaching Assistant,<BR>Dept. of 
B.SC.,<BR>Atlantic Veterinary College, U.P.E.I.,<BR>550 University Ave., 
Charlottetown,<BR>P.E.I.,&nbsp; C1A 4P3 <BR>Canada<BR><BR></DIV></BODY></HTML>