<!DOCTYPE HTML PUBLIC "-//W3C//DTD HTML 4.0 Transitional//EN">
<HTML><HEAD>
<META content="text/html; charset=utf-8" http-equiv=Content-Type>
<META content="MSHTML 5.00.3502.5390" name=GENERATOR></HEAD>
<BODY>
<DIV><FONT color=#0000ff face=Arial><SPAN class=46445415-01102003>If you do not 
have a pump available you can use an old fashion method.&nbsp;&nbsp;A glass 
bottle and stopper&nbsp; with two holes - one for the tubing and 18 gauge 
needle,&nbsp;sharp edge&nbsp;filed smooth (or size required) to be attached 
through and one for air to be admitted that is longer and is above the fluid 
level.&nbsp; Or a refillable IV bag from the pharmacy with tubing.&nbsp; 
The</SPAN></FONT><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
class=46445415-01102003><FONT color=#0000ff face=Arial size=3>&nbsp;bag or 
bottle is hung at least 2 1/2 feet to 3 feet above the level of the animal to be 
perfused so make sure the tubing is long enough.&nbsp; The clamp on the tubing 
for fluid should be adjustable and set for a steady and slow drip to avoid 
vascular damage by rapid rate of flow.&nbsp; The&nbsp; methods for opening the 
chest and exposure of the heart are clear in all of the suggestions given.&nbsp; 
The descending aorta can be clamped to avoid perfusing the lower part of the 
body.&nbsp; (One thing about using a bottle - Remember to place rubber bands 
around the bottle over the stopper as they can come out and fixative goes 
everywhere.)&nbsp;&nbsp; Pam Marcum</FONT></SPAN></FONT></DIV>
<DIV><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
class=46445415-01102003></SPAN></FONT>&nbsp;</DIV>
<DIV><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
class=46445415-01102003></SPAN></FONT>&nbsp;</DIV>
<DIV><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
class=46445415-01102003>&nbsp;</SPAN>-----Original Message-----<BR><B>From:</B> 
histonet-admin@lists.utsouthwestern.edu 
[mailto:histonet-admin@lists.utsouthwestern.edu]<B>On Behalf Of</B> Davis, 
Gareth<BR><B>Sent:</B> Wednesday, October 01, 2003 10:32 AM<BR><B>To:</B> 
Histonet<BR><B>Subject:</B> Re: [Histonet] Perfusion techniques in 
mice/rats<BR><BR></DIV>
<BLOCKQUOTE 
style="BORDER-LEFT: #0000ff 2px solid; MARGIN-LEFT: 5px; MARGIN-RIGHT: 0px; PADDING-LEFT: 5px"></FONT>
  <DIV>
  <P class=MsoTitle style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><STRONG><U><FONT 
  size=5>Perfusion Protocol</FONT></U></STRONG></P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><STRONG>&nbsp;<?xml:namespace 
  prefix = o ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:office" 
  /><o:p></o:p></STRONG></P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>Preparation for 
  Perfusion:<o:p></o:p></B></P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B><o:p></o:p></B>&nbsp;</P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>&nbsp;</B><B>Fixative =4% 
  PFA&nbsp; </B>Prepare fresh on day of use or the night before and keep at 
  4<SUP>o</SUP>C.</P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt 0.5in; TEXT-INDENT: 0.5in">4% 
  Paraformaldehyde</P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><SPAN 
  style="mso-tab-count: 1">&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;</SPAN><SPAN 
  style="mso-tab-count: 1">&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; 
  </SPAN>3.8% Sodium Borate</P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">Add 40g of paraformaldehyde to 
  800ml of water and heat to 60<SUP>o</SUP>C while stirring.<SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>Add 38g of sodium borate, 
  paraformaldehyde will not dissolve until it is added.<SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>Cool off to 4<SUP>o</SUP>C.<SPAN 
  style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>Adjust pH to 9.5 with <B>glacial 
  acetic acid.<o:p></o:p></B></P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>&nbsp;4% PFA with 10% 
  sucrose=</B></P>
  <P class=MsoNormal 
  style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><STRONG>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; 
  </STRONG>In a 100ml cylinder&nbsp;add 10g of Sucrose, than add 4% PFA to 100ml 
  </P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">&nbsp;</P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">&nbsp;</P>
  <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>Perfusion<o:p></o:p></B></P>
  <OL style="MARGIN-TOP: 0in" type=1>
    <LI class=MsoNormal 
    style="MARGIN: 0in 0in 0pt; mso-list: l0 level1 lfo1; tab-stops: list .5in">Anesthetize&nbsp;animal, 
    open thoracic cavity, expose heart and visualize ascending aorta.<SPAN 
    style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>Insert 18-gauge needle (on 
    vacutainer collection tubing) through<U> left ventricle</U> into ascending 
    aorta- if possible, hard to tell sometimes.<SPAN 
    style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>Clamp cannula into place with would 
    clip or small clamp and <U>then&nbsp;snip right atrium</U>.<SPAN 
    style="mso-spacerun: yes">&nbsp;(<STRONG>I find it's easier - on mice- to 
    hold needle in place, because clamp gets in the way</STRONG>).&nbsp;</SPAN> 
    <LI class=MsoNormal 
    style="MARGIN: 0in 0in 0pt; mso-list: l0 level1 lfo1; tab-stops: list .5in"><SPAN 
    style="mso-spacerun: yes"></SPAN>Slowly perfuse animal with about 40-50ml 
    room temperature&nbsp;saline <STRONG>(it's recommended to use a pump here, 
    but I use 50 ml syringe, and perfuse slowly)</STRONG> until fluid 
    is&nbsp;clear<STRONG>.</STRONG><SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN> 

    <LI class=MsoNormal 
    style="MARGIN: 0in 0in 0pt; mso-list: l0 level1 lfo1; tab-stops: list .5in">Change 
    to&nbsp;cold 4% PFA&nbsp;and slowly perfuse animal.<SPAN 
    style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>When the animal’s forelimbs are 
    fully extended reduce perfusion speed, use about 50ml of fixative (for a 30g 
    mouse). 
    <LI class=MsoNormal 
    style="MARGIN: 0in 0in 0pt; mso-list: l0 level1 lfo1; tab-stops: list .5in">After 
    perfusion is complete, decapitate the animal and quickly remove the brain 
    using a caudal approach.<SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </SPAN>Place 
    brain in 4%&nbsp;PFA with 10% sucrose at 4<SUP>o</SUP>C for overnight. (The 
    4%PFA with sucrose will post-fix brain and cryoprotect tissue at the same 
    time.) &nbsp;<STRONG>Some recommend to post-fix in 4% PFA-only, overnight, 
    then cryoprotect with 30% sucrose for another 24 hours</STRONG>. 
  </LI></OL></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2>Ms. Gareth B. Davis</FONT></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2><STRONG>Research Assistant 
  II</STRONG></FONT></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2>Neuro-magnetics Division of 
  </FONT></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2>the Department of 
  Neurology</FONT></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2>Vanderbilt University Medical 
  Center</FONT></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2>615-936-3318</FONT></DIV>
  <DIV><FONT color=#800080 face=System size=2></FONT>&nbsp;</DIV>
  <DIV>&nbsp;</DIV></BLOCKQUOTE></BODY></HTML>