<META HTTP-EQUIV="Content-Type" CONTENT="text/html; charset=utf-8">
<!DOCTYPE HTML PUBLIC "-//W3C//DTD HTML 4.0 Transitional//EN">
<HTML><HEAD>

<META content="MSHTML 5.00.3502.5390" name=GENERATOR></HEAD>
<BODY dir=ltr>
<DIV>Thanks for information on perfusion without a pump.</DIV>
<DIV>&nbsp;</DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Ms. Gareth B. Davis</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2><STRONG>Research Assistant 
II</STRONG></FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Neuro-magnetics Division of 
</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>the Department of 
Neurology</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Vanderbilt University Medical 
Center</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>615-936-3318</FONT></DIV>
<DIV><FONT face=System color=#800080 size=2></FONT>&nbsp;</DIV>
<DIV>&nbsp;</DIV>
<BLOCKQUOTE dir=ltr style="MARGIN-RIGHT: 0px">
  <DIV><FONT size=2>-----Original Message----- <BR><B>From:</B> Pamela Marcum 
  [mailto:pmarcum@polysciences.com] <BR><B>Sent:</B> Wed 10/1/2003 11:07 AM 
  <BR><B>To:</B> Davis, Gareth; Histonet <BR><B>Cc:</B> <BR><B>Subject:</B> RE: 
  [Histonet] Perfusion techniques in mice/rats<BR><BR></FONT></DIV>
  <DIV><FONT face=Arial color=#0000ff><SPAN class=46445415-01102003>If you do 
  not have a pump available you can use an old fashion method.&nbsp;&nbsp;A 
  glass bottle and stopper&nbsp; with two holes - one for the tubing and 18 
  gauge needle,&nbsp;sharp edge&nbsp;filed smooth (or size required) to be 
  attached through and one for air to be admitted that is longer and is above 
  the fluid level.&nbsp; Or a refillable IV bag from the pharmacy with 
  tubing.&nbsp; The</SPAN></FONT><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
  class=46445415-01102003><FONT face=Arial color=#0000ff size=3>&nbsp;bag or 
  bottle is hung at least 2 1/2 feet to 3 feet above the level of the animal to 
  be perfused so make sure the tubing is long enough.&nbsp; The clamp on the 
  tubing for fluid should be adjustable and set for a steady and slow drip to 
  avoid vascular damage by rapid rate of flow.&nbsp; The&nbsp; methods for 
  opening the chest and exposure of the heart are clear in all of the 
  suggestions given.&nbsp; The descending aorta can be clamped to avoid 
  perfusing the lower part of the body.&nbsp; (One thing about using a bottle - 
  Remember to place rubber bands around the bottle over the stopper as they can 
  come out and fixative goes everywhere.)&nbsp;&nbsp; Pam 
  Marcum</FONT></SPAN></FONT></DIV>
  <DIV><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
  class=46445415-01102003></SPAN></FONT>&nbsp;</DIV>
  <DIV><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
  class=46445415-01102003></SPAN></FONT>&nbsp;</DIV>
  <DIV><FONT face="Times New Roman" size=2><SPAN 
  class=46445415-01102003>&nbsp;</SPAN>-----Original 
  Message-----<BR><B>From:</B> histonet-admin@lists.utsouthwestern.edu 
  [mailto:histonet-admin@lists.utsouthwestern.edu]<B>On Behalf Of</B> Davis, 
  Gareth<BR><B>Sent:</B> Wednesday, October 01, 2003 10:32 AM<BR><B>To:</B> 
  Histonet<BR><B>Subject:</B> Re: [Histonet] Perfusion techniques in 
  mice/rats<BR><BR></DIV>
  <BLOCKQUOTE 
  style="PADDING-LEFT: 5px; MARGIN-LEFT: 5px; BORDER-LEFT: #0000ff 2px solid; MARGIN-RIGHT: 0px"></FONT>
    <DIV>
    <P class=MsoTitle style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><STRONG><U><FONT 
    size=5>Perfusion Protocol</FONT></U></STRONG></P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><STRONG></STRONG>&nbsp;</P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>Preparation for 
    Perfusion:</B></P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B></B>&nbsp;</P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>&nbsp;</B><B>Fixative =4% 
    PFA&nbsp; </B>Prepare fresh on day of use or the night before and keep at 
    4<SUP>o</SUP>C.</P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt 0.5in; TEXT-INDENT: 0.5in">4% 
    Paraformaldehyde</P>
    <P class=MsoNormal 
    style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><SPAN>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;</SPAN><SPAN>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; 
    </SPAN>3.8% Sodium Borate</P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">Add 40g of paraformaldehyde 
    to 800ml of water and heat to 60<SUP>o</SUP>C while stirring.<SPAN>&nbsp; 
    </SPAN>Add 38g of sodium borate, paraformaldehyde will not dissolve until it 
    is added.<SPAN>&nbsp; </SPAN>Cool off to 4<SUP>o</SUP>C.<SPAN>&nbsp; 
    </SPAN>Adjust pH to 9.5 with <B>glacial acetic acid.</B></P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>&nbsp;4% PFA with 10% 
    sucrose=</B></P>
    <P class=MsoNormal 
    style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><STRONG>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; 
    </STRONG>In a 100ml cylinder&nbsp;add 10g of Sucrose, than add 4% PFA to 
    100ml </P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">&nbsp;</P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">&nbsp;</P>
    <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><B>Perfusion</B></P>
    <OL style="MARGIN-TOP: 0in" type=1>
      <LI class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">Anesthetize&nbsp;animal, 
      open thoracic cavity, expose heart and visualize ascending 
      aorta.<SPAN>&nbsp; </SPAN>Insert 18-gauge needle (on vacutainer collection 
      tubing) through<U> left ventricle</U> into ascending aorta- if possible, 
      hard to tell sometimes.<SPAN>&nbsp; </SPAN>Clamp cannula into place with 
      would clip or small clamp and <U>then&nbsp;snip right 
      atrium</U>.<SPAN>&nbsp;(<STRONG>I find it's easier - on mice- to hold 
      needle in place, because clamp gets in the way</STRONG>).&nbsp;</SPAN> 
      <LI class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt"><SPAN></SPAN>Slowly 
      perfuse animal with about 40-50ml room temperature&nbsp;saline 
      <STRONG>(it's recommended to use a pump here, but I use 50 ml syringe, and 
      perfuse slowly)</STRONG> until fluid 
      is&nbsp;clear<STRONG>.</STRONG><SPAN>&nbsp;</SPAN> 
      <LI class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">Change to&nbsp;cold 4% 
      PFA&nbsp;and slowly perfuse animal.<SPAN>&nbsp; </SPAN>When the animal’s 
      forelimbs are fully extended reduce perfusion speed, use about 50ml of 
      fixative (for a 30g mouse). 
      <LI class=MsoNormal style="MARGIN: 0in 0in 0pt">After perfusion is 
      complete, decapitate the animal and quickly remove the brain using a 
      caudal approach.<SPAN>&nbsp; </SPAN>Place brain in 4%&nbsp;PFA with 10% 
      sucrose at 4<SUP>o</SUP>C for overnight. (The 4%PFA with sucrose will 
      post-fix brain and cryoprotect tissue at the same time.) 
      &nbsp;<STRONG>Some recommend to post-fix in 4% PFA-only, overnight, then 
      cryoprotect with 30% sucrose for another 24 hours</STRONG>. </LI></OL></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Ms. Gareth B. Davis</FONT></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2><STRONG>Research Assistant 
    II</STRONG></FONT></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Neuro-magnetics Division of 
    </FONT></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>the Department of 
    Neurology</FONT></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>Vanderbilt University Medical 
    Center</FONT></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2>615-936-3318</FONT></DIV>
    <DIV><FONT face=System color=#800080 size=2></FONT>&nbsp;</DIV>
    <DIV>&nbsp;</DIV></BLOCKQUOTE></BLOCKQUOTE></BODY></HTML>